Pablo Conejeros Abraham

Pablo Conejeros Abraham

Profesor Auxiliar

Instituto de Biología
Centro de Investigación y Gestión de Recursos Naturales (CIGREN)

Facultad de Ciencias
Universidad de Valparaíso

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Información de contacto:

  • Dirección institucional: Avenida Gran Bretaña 1111, 7° piso, Playa Ancha, Valparaíso.
  • Teléfono: 56-32-2508084
  • Correo electrónico: pablo.conejeros@uv.cl

Líneas de Investigación:

Las líneas de investigación de nuestro laboratorio refieren fundamentalmente al diseño de tecnologías moleculares de detección.

Por una parte, se desarrollan y prueban tecnologías para la detección de patógenos de la industria acuícola en colaboración con el Laboratorio de referencia de Sernapesca. Estas tecnologías incluyen métodos novedosos para la detección de patógenos como IPN e ISA, y por otro lado el diseño de sistemas para calificar el estado de las muestras de diagnóstico mediante sistemas de cuantificación de mRNA de genes endógenos. También en colaboración con Laboratorio de referencia de Sernapesca, se está elaborando un manual que establece las condiciones para la importación de patógenos, como guía de referencia para el diseño de los laboratorios que trabajen con estos microorganismos.

Por otra parte, los proyectos principales del laboratorio apuntan a la detección de toxinas de mareas rojas, en particular, la detección de derivados de saxitoxinas, componentes del Veneno Paralizante de Mariscos (VPM). Tradicionalmente, las saxitoxinas que pueden estar presente en los moluscos bivalvos son cuantificadas mediante cromatografía liquida de alta resolución (HPLC), y por otro lado mediante el bioensayo ratón (MBA). Ambas metodologías tradicionales suponen una serie de desventajas, por lo que mundialmente se busca su reemplazo mediante el desarrollo de nuevos métodos. En nuestro laboratorio, estamos desarrollando dos tecnologías novedosas para la detección de derivados de saxitoxina:

La primera tecnología refiere al uso de aptámeros para la detección. Los aptámeros son cadenas simples de ADN o ARN de pequeño tamaño, que se unen a otras moléculas con alta afinidad y especificidad. Los aptámeros típicamente son seleccionados desde una librería de 1020 secuencias diferentes de ADN o ARN, y amplificados por PCR. Luego de la selección del aptámero adecuado contra saxitoxinas, el objetivo del proyecto es modificarlo para que pueda ser usado como un sensor fluorescente, el cual reporte la presencia de las toxinas, sin la necesidad de equipos sofisticados, y en un ensayo que puede ser aplicado en un solo paso experimental.

En este mismo ámbito del diseño de tecnologías para la detección de saxitoxinas en forma simple y rápida, se desarrolla otro de los proyectos principales del laboratorio. Este consiste en la detección de las toxinas mediante vesículas cromáticas, las cuales son micelas estructuradas de tal forma que cambian bruscamente de color cuando son perturbadas. El proyecto tiene por objetivo revisar la factibilidad de utilizar este sistema como método rápido de detección, mediante la inserción de un canal de sodio recombinante en la membrana de las vesículas, de modo que la interacción de las saxitoxinas con éste provoque una perturbación de las micelas que cambie su coloración.

Áreas de Investigación / Especialidad:

Biotecnología

Proyectos Vigentes:

  • Proyecto FONDECYT regular 1140772. “Disease Resistance in Salmonids: Genetic analysis of co-infection of the Sea Lice Caligus rogercresseyi and the bacteria Piscirickettsia salmonis”.
  • Proyecto FONDEF Concurso de Ciencia Aplicada – Programa Idea CA13I10274 “Desarrollo de una plataforma de biosensor lipídico para la detección de marea roja in situ”.
  • Investigador asociado, Proyecto Anillo del Programa de Investigación Asociativa de CONICYT “Fabricación de nano-dispositivos para mediciones de alta precisión en biología y materiales nanoestructurados de interés biomédico”.

 

Publicaciones Seleccionadas:

  • Conejeros, P, Phan, A, Power, P, O´Connel, M, Alekseyev, S, Salinas, I, and B. Dixon. (2014). Differentiation of Sympatric Arctic Char Morphotypes Using Major Histocompatibility Class II Genes. Trans. Amer. Fish. Soc. 143:586–594.
  • Conejeros P, M Power, S Alekseyev & B Dixon (2012). Global major histocompatibility Class II β (mh-IIβ)-polymorphism in Arctic charr Salvelinus alpinus. Journal of Fish Biology 81(4): 1158-1174.
    http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8649.2012.03350.x
  • Conejeros PA, C Calderón, D Gómez, L Nilo & SH Marshall (2011). High immune diversity in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.). Aquaculture International 19(5): 999-1005.
    http://dx.doi.org/10.1007/s10499-011-9417-0
  • Eissler Y, MS Pavlov, P Conejeros, JC Espinoza & J Kuznar (2011). Detection and quantification of Chilean strains of infectious pancreatic necrosis virus by real-time RT-PCR assays using segment B as a target. Latin American Journal of Aquatic Research 39(3): 544-552.
    http://dx.doi.org/10.3856/vol39-issue3-fulltext-14
  • Gómez D, P Conejeros, S Consuegra & SH Marshall (2011). MHC mediated resistance to Piscirickettsia salmonis in salmonids farmed in Chile. Aquaculture 318(1-2): 15-19.
    http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.04.023
  • Cárdenas C, A Bidon-Chanal, P Conejeros, G Arenas, S Marshall & FJ Luque (2010). Molecular modeling of class I and II alleles of the major histocompatibility complex in Salmo salar. Journal of Computer-Aided Molecular Design 24(12): 1035-1051.
    http://dx.doi.org/10.1007/s10822-010-9387-8
  • Gómez D, P Conejeros, SH Marshall & S Consuegra (2010). MHC evolution in three salmonid species: a comparison between class II alpha and beta genes. Immunogenetics 62(8): 531-542.
    http://dx.doi.org/10.1007/s00251-010-0456-x
  • Conejeros P, A Phan, M Power, S Alekseyev, M O’Connell, B Dempson & B Dixon (2008). MH Class IIα polymorphism in local and global adaptation of Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). Immunogenetics 60(6): 325-337.
    http://dx.doi.org/10.1007/s00251-008-0290-6
  • Marshall SH, P Conejeros, M Zahr, J Olivares, F Gómez, P Cataldo & V Henríquez (2007). Immunological characterization of a bacterial protein isolated from salmonid fish naturally infected with Piscirickettsia salmonis. Vaccine 25(11): 2095-2102.
    http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.11.035

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